Question
Quelle méthode de lavage recommandez-vous pour les lames de microscopie en panier inox?
1 réponse
Je recommande un lavage “type histologie” en panier inox, avec contrôle strict des résidus ioniques/organique :
1) Pré-rinçage immédiat : eau ultrapure (18,2 MΩ·cm) en agitation 2–3 min pour décrocher sels/protéines non fixées.
2) Détergence : bain alcalin doux (détergent non ionique, faible moussage) à 40–50 °C, 10–15 min en ultrasons (si lames compatibles) ou agitation. Objectif : décrocher lipides/agents de montage et biofilms sans attaquer le verre.
3) Rinçages séquentiels : 3× eau ultrapure (renouvelée), puis rinçage final à eau ultrapure “fraîche” pour abaisser conductivité résiduelle.
4) Désoxydation/anti-traces (option) : bref bain acide dilué (type HCl 0,1–0,5 M) si dépôts carbonatés/oxydes, puis rinçage immédiat abondant à eau ultrapure.
5) Séchage : air filtré (HEPA) ou étuve 60–80 °C ; éviter essuyage (particules).
6) Stockage : boîte fermée, faible poussière.
Pour lames destinées à immunofluorescence, éviter solvants agressifs post-traitement et valider l’absence d’autofluorescence/film détergent.
1) Pré-rinçage immédiat : eau ultrapure (18,2 MΩ·cm) en agitation 2–3 min pour décrocher sels/protéines non fixées.
2) Détergence : bain alcalin doux (détergent non ionique, faible moussage) à 40–50 °C, 10–15 min en ultrasons (si lames compatibles) ou agitation. Objectif : décrocher lipides/agents de montage et biofilms sans attaquer le verre.
3) Rinçages séquentiels : 3× eau ultrapure (renouvelée), puis rinçage final à eau ultrapure “fraîche” pour abaisser conductivité résiduelle.
4) Désoxydation/anti-traces (option) : bref bain acide dilué (type HCl 0,1–0,5 M) si dépôts carbonatés/oxydes, puis rinçage immédiat abondant à eau ultrapure.
5) Séchage : air filtré (HEPA) ou étuve 60–80 °C ; éviter essuyage (particules).
6) Stockage : boîte fermée, faible poussière.
Pour lames destinées à immunofluorescence, éviter solvants agressifs post-traitement et valider l’absence d’autofluorescence/film détergent.
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