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C'est le compteur d'utilisation des filtres qui arrive au bout . Cela veut dire certainement un changement de filtres et une remise à zero du compteur 

Xavier LEVY

Bonjour Il s'agit d'un ISOLATEUR à Flux laminaire donc d'un PSM TYPE 3

La petite hélice blanche à l'extrémité de la sonde du conductivimètre EMCEE 1152 est une composante essentielle pour assurer une mesure précise de la conductivité de liquides, particulièrement dans des environnements où le liquide peut ne pas être homogène ou bien mélangé.

### Fonction de l'hélice blanche :
1. **Agitation Continue** : L'hélice agit comme un mécanisme d'agitation qui assure que le liquide autour de la sonde est constamment en mouvement. Cette agitation est cruciale pour éviter les gradients de concentration ou de température qui pourraient affecter la précision de la mesure.
2. **Homogénéisation** : En créant un flux dynamique autour de la sonde, l'hélice contribue à homogénéiser l'échantillon, assurant que la conductivité mesurée est représentative de l'ensemble du liquide et non d'une région localisée.
3. **Prévention de Dépôts** : L'agitation continue minimise également la formation de dépôts ou de bulles d'air sur les électrodes de la sonde, ce qui pourrait autrement nuire à la précision de la mesure.

### Mesure sans l'hélice :
Si la mesure est effectuée sans l'hélice blanche, plusieurs problèmes peuvent survenir :
1. **Non-homogénéité de l'Échantillon** : Sans agitation, les variations locales de concentration ou de température ne seront pas équilibrées, ce qui peut conduire à des mesures erronées.
2. **Dépôts sur les Électrodes** : L'absence d'agitation augmente le risque que des particules solides en suspension ou des bulles d'air adhèrent aux électrodes de la sonde, perturbant ainsi la mesure de la conductivité.
3. **Fluctuations de Mesures** : Le liquide stagnant autour de la sonde pourrait entraîner des fluctuations dans les lectures de conductivité, rendant difficile l'obtention d'une mesure stable et fiable.

### Conclusion :
La petite hélice blanche est donc un élément critique pour garantir des mesures précises et fiables avec le conductivimètre EMCEE 1152. Sans cette hélice, les mesures obtenues risquent d'être incorrectes en raison des facteurs mentionnés ci-dessus. Pour des résultats optimaux, il est impératif que la sonde soit utilisée avec l'hélice en place, assurant ainsi une homogénéisation et une agitation adéquates du liquide échantillonné.

Oui, vous avez raison. Pour une extraction d'ADN utilisant du phénol à pH 8, vous devez effectivement utiliser la phase aqueuse, qui est la phase supérieure. Voici une explication plus détaillée :

Le phénol à pH 8 est souvent utilisé dans les protocoles d'extraction d'ADN pour séparer les protéines et d'autres contaminants de l'ADN. Lors de la centrifugation de votre mélange d'échantillon avec du phénol, deux phases se forment :

1. **Phase Aqueuse (Phase Supérieure)** : Cette phase contient principalement l'ADN, car à pH 8, l'ADN reste soluble dans l'eau.
2. **Phase Organique (Phase Inférieure)** : Cette phase contient principalement des protéines dénaturées, des lipides et d'autres contaminants.

Pour extraire l'ADN, vous devrez donc récupérer la phase supérieure (aqueuse) après centrifugation. Voici une étape typique de ce processus :

1. **Centrifugation** : Après avoir mélangé votre échantillon avec du phénol, vous centrifugez le mélange pour séparer les phases.
2. **Récupération de la Phase Supérieure** : Utilisez une pipette pour soigneusement récupérer la phase aqueuse sans perturber la phase organique inférieure. Cette phase aqueuse contient l'ADN.

Si vous recherchez des produits pour optimiser et simplifier votre extraction d'ADN, vous pouvez envisager d'utiliser des kits d'extraction d'ADN disponibles sur le marché, comme :

- **Kit MagBeads FastDNA® pour le sang** : Ce kit utilise des particules magnétiques pour purifier l'ADN total à partir de divers échantillons biologiques, éliminant ainsi le besoin d'utiliser des produits chimiques comme le phénol.
- **Kit FastDNA™ SPIN** : Ce kit permet une extraction rapide et efficace de l'ADN génomique à partir de diverses sources, sans nécessiter de réactifs organiques dangereux comme le phénol.

Ces kits peuvent offrir une méthode plus sûre et plus efficace pour l'extraction d'ADN, en particulier si vous souhaitez éviter l'utilisation de produits chimiques toxiques comme le phénol.

La biotechnologie alimentaire est l'application de la science et des technologies biologiques à la production, à la transformation, à la conservation et à la sécurité des aliments. Cela inclut l'utilisation de microorganismes, d'enzymes, de cultures cellulaires et de techniques moléculaires pour améliorer la qualité, la sécurité, la durée de conservation et la valeur nutritionnelle des produits alimentaires. La biotechnologie alimentaire couvre un large éventail de domaines et de technologies, notamment :

1. **Fermentation** : Utilisation de microorganismes tels que des bactéries, des levures et des moisissures pour la production de produits alimentaires fermentés comme le yaourt, le pain, la bière, le vin et le fromage.

2. **Enzymes** : Application d'enzymes pour catalyser des réactions biochimiques spécifiques dans les aliments, par exemple, les enzymes protéolytiques pour attendrir la viande ou les enzymes amylases pour convertir l'amidon en sucre dans la production de sirops.

3. **Génie génétique** : Modification génétique d'organismes pour améliorer les caractéristiques des aliments, comme la résistance aux maladies, la tolérance aux conditions environnementales défavorables ou l'enrichissement nutritionnel. Par exemple, les cultures transgéniques.

4. **Diagnostics et tests** : Utilisation de techniques de biologie moléculaire, telles que la PCR (polymerase chain reaction), pour détecter la présence d'allergènes, de pathogènes ou de composants spécifiques dans les aliments. Par exemple, le kit SureFood® ALLERGEN 4plex permet la détection des séquences d'ADN spécifiques à l'arachide, à la noisette et au noyer.

5. **Immunoessais** : Utilisation de tests immunoenzymatiques pour la détection et la quantification de composants alimentaires spécifiques, comme le test RIDASCREEN®FAST Gliadin sensitive pour la détection des prolamines dans les aliments sans gluten, ou le RIDASCREEN® Peanut pour quantifier les protéines d'arachide.

6. **Bioconservation** : Utilisation de microorganismes ou de produits dérivés pour prolonger la durée de conservation des aliments en inhibant la croissance des agents pathogènes et des microorganismes de détérioration.

7. **Analyse des contaminants** : Détection de contaminants chimiques, microbiologiques et physiques dans les aliments pour garantir la sécurité alimentaire. Par exemple, les kits d'analyse alimentaire de Microsynth permettent de retrouver ou de quantifier les gènes marqueurs d'animaux spécifiques, d'allergènes ou de transgènes dans des échantillons d'aliments.

En résumé, la biotechnologie alimentaire intègre diverses techniques et technologies pour améliorer la production alimentaire, garantir la sécurité et la qualité des aliments, ainsi que répondre aux besoins nutritionnels et aux préférences des consommateurs.

Le problème que vous rencontrez avec votre COT-mètre (Carbon Organic Total) après avoir nettoyé la paillasse avec de l'acétone peut être attribué à plusieurs facteurs. Voici une procédure technique détaillée pour diagnostiquer et résoudre ce problème :

1. **Vérification des résidus d'acétone :**
- L'acétone est un solvant puissant et volatil, mais il peut laisser des résidus qui interfèrent avec les mesures de COT. Assurez-vous que la paillasse et toutes les surfaces de contact ont été complètement débarrassées de tout résidu d'acétone.
- Utilisez de l'eau ultrapure pour rincer abondamment toutes les surfaces ayant été en contact avec l'acétone. Séchez ensuite avec de l'air comprimé propre ou laissez sécher à l'air libre dans un environnement non contaminant.

2. **Contrôle des composants internes :**
- Vérifiez si l'acétone a pu contaminer des parties internes du COT-mètre, telles que les conduites, les réacteurs, ou les détecteurs. Si c'est le cas, un nettoyage interne approfondi peut être nécessaire.
- Consultez le manuel d'entretien de votre modèle spécifique pour obtenir des instructions sur le nettoyage interne. Par exemple, pour un COT-mètre Shimadzu TOC-L, suivez les procédures de nettoyage recommandées par le fabricant.

3. **Vérification des réactifs et des standards :**
- Assurez-vous que les réactifs (comme l'acide phosphorique ou les persulfates) et les standards utilisés pour les calibrations et les blancs ne sont pas contaminés par l'acétone ou d'autres substances.
- Préparez de nouveaux réactifs et standards si nécessaire, en utilisant de l'eau ultrapure pour éviter toute contamination croisée.

4. **Calibrations et validations :**
- Après avoir effectué le nettoyage, lancez une nouvelle série de calibrations pour vérifier la précision et l'exactitude de votre COT-mètre.
- Utilisez des standards certifiés pour effectuer des tests de validation. Par exemple, des standards tels que ceux fournis par NIST (National Institute of Standards and Technology) peuvent être utilisés pour valider la performance de l'instrument.

5. **Vérification des paramètres de méthode :**
- Reconsidérez les paramètres de méthode utilisés pour les analyses de blancs. Des ajustements peuvent être nécessaires pour optimiser les conditions de mesure après un nettoyage avec un solvant puissant.
- Consultez les spécifications techniques et les recommandations du fabricant pour les réglages optimaux.

6. **Documentation et assistance technique :**
- Documentez toutes les étapes de nettoyage et de reconfiguration de l'instrument. Cela peut aider à suivre les modifications et à identifier les sources de problèmes potentiels.
- Si le problème persiste, contactez le support technique du fabricant du COT-mètre. Par exemple, si vous utilisez un COT-mètre de la marque Shimadzu, PerkinElmer, ou Hach, leur support technique pourra fournir des conseils spécifiques pour votre modèle.

En suivant ces étapes, vous devriez être en mesure de diagnostiquer et de résoudre les problèmes de non-conformité des blancs sur votre COT-mètre après un nettoyage avec de l'acétone.

Pour des boîtes de Pétri carrées, il serait utile de préciser les dimensions exactes dont vous avez besoin et le matériau de fabrication souhaité. Cependant, basées sur les produits disponibles, voici quelques recommandations de boîtes transparentes qui pourraient répondre à votre besoin, bien qu'elles ne soient pas spécifiquement mentionnées comme des boîtes de Pétri :

1. **Boîte mixte PP/PS cristal 1010M**
- *Dimensions*: 78 x 78 x 26 mm
- *Matériau*: Polystyrène cristal transparent
- *Caractéristiques*: Disponible en stock, peut être réalisée en couleur à partir de 5000 pièces et imprimée à partir de 1000 pièces.

2. **Boîte à compartiments 962c**
- *Dimensions intérieures*: 90 x 60 x 20 mm
- *Nombre de compartiments*: 6 compartiments de 30 x 30 mm
- *Matériau*: Polystyrène cristal transparent
- *Caractéristiques*: Disponible en stock, possibilité de réalisation en couleur à partir de 5000 pièces et impression à partir de 1000 pièces.

3. **Boîte LAB réf lab6**
- *Dimensions intérieures*: 335 x 235 x 130 mm
- *Matériau*: Polystyrène cristal
- *Caractéristiques*: Gerbables, multiples les unes des autres, porte-étiquette intérieur.

Ces boîtes ne sont pas spécifiquement des boîtes de Pétri mais pourraient être adaptées à des usages similaires en laboratoire en raison de leur transparence et de leurs matériaux. Si vous avez des besoins très spécifiques en termes de dimensions ou de matériaux, il pourrait être utile de contacter les fabricants pour des fabrications spéciales ou des impressions personnalisées.

Pour une utilisation simultanée de fluorophores en TaqMan sur un appareil LightCycler 480 (LC480), il est crucial de choisir des fluorophores dont les spectres d'excitation et d'émission sont suffisamment distincts pour éviter le chevauchement et l'interférence. Le LC480 est équipé de plusieurs canaux de détection, chacun avec des filtres spécifiques. Voici quelques recommandations de fluorophores qui peuvent être utilisés simultanément sur ce type d'appareil :

1. **FAM (Fluorescein amidite) :**
- **Excitation** : 495 nm
- **Émission** : 520 nm
- **Canal** : 465-510 nm

2. **HEX (Hexachlorofluorescein) ou VIC :**
- **Excitation** : 535 nm
- **Émission** : 556 nm
- **Canal** : 533-580 nm

3. **ROX (Carboxy-X-Rhodamine) :**
- **Excitation** : 575 nm
- **Émission** : 602 nm
- **Canal** : 533-610 nm

4. **Cy5 (Cyanine 5) :**
- **Excitation** : 650 nm
- **Émission** : 667 nm
- **Canal** : 618-660 nm

5. **Texas Red :**
- **Excitation** : 596 nm
- **Émission** : 620 nm
- **Canal** : 533-610 nm

6. **Quasar 670 :**
- **Excitation** : 647 nm
- **Émission** : 670 nm
- **Canal** : 640-700 nm

Il est essentiel de vérifier les spécifications exactes des filtres de votre LC480, car la disponibilité des canaux peut varier légèrement en fonction de la configuration de l'appareil.

### Conseils pratiques :

- **Vérifiez les spectres :** Avant de sélectionner vos fluorophores, consultez les spectres d'excitation et d'émission pour vous assurer qu'il y a un chevauchement minimal entre les fluorophores choisis.
- **Calibration de l'appareil :** Effectuez une calibration de l'appareil avec les fluorophores choisis pour garantir des mesures précises.
- **Contrôles :** Utilisez des contrôles pour chaque fluorophore afin de vérifier qu'il n'y a pas de contamination croisée entre les canaux.

### Produits recommandés :

- **TaqMan Probes (Thermo Fisher Scientific) :** Un large choix de sondes TaqMan pré-conjuguées avec différents fluorophores compatibles avec LC480.
- **LightCycler Probes (Roche) :** Spécifiquement conçues pour une compatibilité optimale avec les instruments LightCycler.

En résumé, pour une utilisation optimale des fluorophores en TaqMan sur un LC480, sélectionnez des fluorophores dont les spectres sont distincts et compatibilisez-les avec les canaux de détection de votre appareil. Assurez-vous toujours de vérifier les spécifications techniques de votre instrument pour une meilleure adéquation.